Naar aanleiding van een dierstudie gepubliceerd in Science komt de Volkskrant met een paginagroot artikel over een nieuwe vorm van CAR-T celtherapie bij LUPUS, een auto-immuunziekte en bij vormen van lymfklierkanker en leukemie.
De onderzoekers gebruikten een heel klein beetje mRNA in hun studie met proefdieren. Theresa Hunter en collega’s gebruikten daarvoor hele kleine vetbolletjes met daarin de mRNA. De ingespoten mRNA gaan in het lichaam op zoek naar T-cellen. Heeft het nanodeeltje een T-cel gevonden, dan hecht het vetbolletje zich via een speciaal zuignapje vast aan de T-cel en zorgt hetmRNA ervoor dat de T-cel een extra pootje aanmaakt. Een pootje, waarmee hij bijvoorbeeld kankercellen aanvalt.
Al drie uur na injectie van de vetbolletjes waren de B-cellen van de muizen nagenoeg volledig weg.
In het Volkskrantartikel staat grafisch mooi weergegeven hoe deze methode werkt bij LUPUS cellen en leukemiercellen.
Het summiere abstract van de dierstudie met deze nieuwe vorm van CAR-T celtherapie is gepubliceerd in Science, Het artikel in de Volkskrant geeft een veel betere beschrijving van de methode en is ook in het Nederlands. Is echter alleen voor abonnees, maar via archive.ph wel volledig te lezen. zie
Veelbelovende truc verlost proefdieren binnen paar uur van lupus- of lymfklierkankercellen
Klik hier voor het artikel in Archive.ph
Hier het abstract van het originele studieverslag
In vivo CAR T cell generation to treat cancer and autoimmune disease
Science
19 Jun 2025
Vol 388, Issue 6753
pp. 1311-1317
Editor’s summary
Chimeric antigen receptor (CAR)–T cell therapies have been highly successful for treating B cell malignancies and also have potential for the treatment of autoimmune disease. However, complex manufacturing and conditioning regimens have limited their accessibility and scalability. Hunter et al. report a gene-delivery system to generate CAR-T cells in vivo by dosing of a CD8-targeted lipid nanoparticle carrying anti-CD19 CAR mRNA (see the Perspective by Peche and Gottschalk). Data from rodent and nonhuman primate (NHP) models demonstrated tumor control. In autoimmune models, deep and transient depletion of B cells was observed in the blood and tissues of NHPs, resulting in an “immune reset.” Such a strategy may provide an off-the-shelf, nonviral, and scalable alternative to ex vivo CAR-T cell immunotherapy. —Priscilla N. Kelly
Abstract
Chimeric antigen receptor (CAR) T cell therapies have transformed treatment of B cell malignancies. However, their broader application is limited by complex manufacturing processes and the necessity for lymphodepleting chemotherapy, restricting patient accessibility. We present an in vivo engineering strategy using targeted lipid nanoparticles (tLNPs) for messenger RNA delivery to specific T cell subsets. These tLNPs reprogrammed CD8+ T cells in both healthy donor and autoimmune patient samples, and in vivo dosing resulted in tumor control in humanized mice and B cell depletion in cynomolgus monkeys. In cynomolgus monkeys, the reconstituted B cells after depletion were predominantly naïve, suggesting an immune system reset. By eliminating the requirements for complex ex vivo manufacturing, this tLNP platform holds the potential to make CAR T cell therapies more accessible and applicable across additional clinical indications.
By Vivek Peche, Stephen GottschalkScience19 Jun 2025
Supplementary Materials
The PDF file includes:
Other Supplementary Material for this manuscript includes the following:
Data S1 and S2
- Download
- 201.60 KB
MDAR Reproducibility Checklist
- Download
- 156.60 KB
References and Notes
1
V. Wang, M. Gauthier, V. Decot, L. Reppel, D. Bensoussan, Systematic Review on CAR-T Cell Clinical Trials Up to 2022: Academic Center Input. Cancers 15, 1003 (2023).
2
K. M. Cappell, J. N. Kochenderfer, Long-term outcomes following CAR T cell therapy: What we know so far. Nat. Rev. Clin. Oncol. 20, 359–371 (2023).
3
J. J. Melenhorst, G. M. Chen, M. Wang, D. L. Porter, C. Chen, M. A. Collins, P. Gao, S. Bandyopadhyay, H. Sun, Z. Zhao, S. Lundh, I. Pruteanu-Malinici, C. L. Nobles, S. Maji, N. V. Frey, S. I. Gill, A. W. Loren, L. Tian, I. Kulikovskaya, M. Gupta, D. E. Ambrose, M. M. Davis, J. A. Fraietta, J. L. Brogdon, R. M. Young, A. Chew, B. L. Levine, D. L. Siegel, C. Alanio, E. J. Wherry, F. D. Bushman, S. F. Lacey, K. Tan, C. H. June, Decade-long leukaemia remissions with persistence of CD4+ CAR T cells. Nature 602, 503–509 (2022).
4
A. Gajra, A. Zalenski, A. Sannareddy, Y. Jeune-Smith, K. Kapinos, A. Kansagra, Barriers to Chimeric Antigen Receptor T-Cell (CAR-T) Therapies in Clinical Practice. Pharmaceut. Med. 36, 163–171 (2022).
5
G. Schett, A. Mackensen, D. Mougiakakos, CAR T-cell therapy in autoimmune diseases. Lancet 402, 2034–2044 (2023).
6
C. Bergmann, F. Müller, J. H. W. Distler, A.-H. Györfi, S. Völkl, M. Aigner, S. Kretschmann, H. Reimann, T. Harrer, N. Bayerl, S. Boeltz, A. Wirsching, J. Taubmann, W. Rösler, B. Spriewald, J. Wacker, A. Atzinger, M. Uder, T. Kuwert, A. Mackensen, G. Schett, Treatment of a patient with severe systemic sclerosis (SSc) using CD19-targeted CAR T cells. Ann. Rheum. Dis. 82, 1117–1120 (2023).
7
D. Mougiakakos, G. Krönke, S. Völkl, S. Kretschmann, M. Aigner, S. Kharboutli, S. Böltz, B. Manger, A. Mackensen, G. Schett, CD19-Targeted CAR T Cells in Refractory Systemic Lupus Erythematosus. N. Engl. J. Med. 385, 567–569 (2021).
8
A. Mackensen, F. Müller, D. Mougiakakos, S. Böltz, A. Wilhelm, M. Aigner, S. Völkl, D. Simon, A. Kleyer, L. Munoz, S. Kretschmann, S. Kharboutli, R. Gary, H. Reimann, W. Rösler, S. Uderhardt, H. Bang, M. Herrmann, A. B. Ekici, C. Buettner, K. M. Habenicht, T. H. Winkler, G. Krönke, G. Schett, Anti-CD19 CAR T cell therapy for refractory systemic lupus erythematosus. Nat. Med. 28, 2124–2132 (2022).
9
A.-C. Pecher, L. Hensen, R. Klein, R. Schairer, K. Lutz, D. Atar, C. Seitz, A. Stanger, J. Schneider, C. Braun, M. Schmidt, M. Horger, A. Bornemann, C. Faul, W. Bethge, J. Henes, C. Lengerke, CD19-Targeting CAR T Cells for Myositis and Interstitial Lung Disease Associated With Antisynthetase Syndrome. JAMA 329, 2154–2162 (2023).
10
A. Haghikia, T. Hegelmaier, D. Wolleschak, M. Böttcher, C. Desel, D. Borie, J. Motte, G. Schett, R. Schroers, R. Gold, D. Mougiakakos, Anti-CD19 CAR T cells for refractory myasthenia gravis. Lancet Neurol. 22, 1104–1105 (2023).
11
N. Conrad, S. Misra, J. Y. Verbakel, G. Verbeke, G. Molenberghs, P. N. Taylor, J. Mason, N. Sattar, J. J. V. McMurray, I. B. McInnes, K. Khunti, G. Cambridge, Incidence, prevalence, and co-occurrence of autoimmune disorders over time and by age, sex, and socioeconomic status: A population-based cohort study of 22 million individuals in the UK. Lancet 401, 1878–1890 (2023).
12
M. H. Roberts, E. Erdei, Comparative United States autoimmune disease rates for 2010-2016 by sex, geographic region, and race. Autoimmun. Rev. 19, 102423 (2020).
13
F. W. Miller, The increasing prevalence of autoimmunity and autoimmune diseases: An urgent call to action for improved understanding, diagnosis, treatment, and prevention. Curr. Opin. Immunol. 80, 102266 (2023).
14
J. G. Rurik, I. Tombácz, A. Yadegari, P. O. Méndez Fernández, S. V. Shewale, L. Li, T. Kimura, O. Y. Soliman, T. E. Papp, Y. K. Tam, B. L. Mui, S. M. Albelda, E. Puré, C. H. June, H. Aghajanian, D. Weissman, H. Parhiz, J. A. Epstein, CAR T cells produced in vivo to treat cardiac injury. Science 375, 91–96 (2022).
15
L. Zhang, K. R. More, A. Ojha, C. B. Jackson, B. D. Quinlan, H. Li, W. He, M. Farzan, N. Pardi, H. Choe, Effect of mRNA-LNP components of two globally-marketed COVID-19 vaccines on efficacy and stability. NPJ Vaccines 8, 156 (2023).
16
A. Kheirolomoom, A. J. Kare, E. S. Ingham, R. Paulmurugan, E. R. Robinson, M. Baikoghli, M. Inayathullah, J. W. Seo, J. Wang, B. Z. Fite, B. Wu, S. K. Tumbale, M. N. Raie, R. H. Cheng, L. Nichols, A. D. Borowsky, K. W. Ferrara, In situ T-cell transfection by anti-CD3-conjugated lipid nanoparticles leads to T-cell activation, migration, and phenotypic shift. Biomaterials 281, 121339 (2022).
17
M. M. Billingsley, N. Gong, A. J. Mukalel, A. S. Thatte, R. El-Mayta, S. K. Patel, A. E. Metzloff, K. L. Swingle, X. Han, L. Xue, A. G. Hamilton, H. C. Safford, M.-G. Alameh, T. E. Papp, H. Parhiz, D. Weissman, M. J. Mitchell, In Vivo mRNA CAR T Cell Engineering via Targeted Ionizable Lipid Nanoparticles with Extrahepatic Tropism. Small 20, 2304378 (2024).
18
N. N. Parayath, S. B. Stephan, A. L. Koehne, P. S. Nelson, M. T. Stephan, In vitro-transcribed antigen receptor mRNA nanocarriers for transient expression in circulating T cells in vivo. Nat. Commun. 11, 6080 (2020).
19
M. Sedic, J. J. Senn, A. Lynn, M. Laska, M. Smith, S. J. Platz, J. Bolen, S. Hoge, A. Bulychev, E. Jacquinet, V. Bartlett, P. F. Smith, Safety Evaluation of Lipid Nanoparticle-Formulated Modified mRNA in the Sprague-Dawley Rat and Cynomolgus Monkey. Vet. Pathol. 55, 341–354 (2018).
20
Z. Good, J. Y. Spiegel, B. Sahaf, M. B. Malipatlolla, Z. J. Ehlinger, S. Kurra, M. H. Desai, W. D. Reynolds, A. Wong Lin, P. Vandris, F. Wu, S. Prabhu, M. P. Hamilton, J. S. Tamaresis, P. J. Hanson, S. Patel, S. A. Feldman, M. J. Frank, J. H. Baird, L. Muffly, G. K. Claire, J. Craig, K. A. Kong, D. Wagh, J. Coller, S. C. Bendall, R. J. Tibshirani, S. K. Plevritis, D. B. Miklos, C. L. Mackall, Post-infusion CAR TReg cells identify patients resistant to CD19-CAR therapy. Nat. Med. 28, 1860–1871 (2022).
21
V. R. Moulton, G. C. Tsokos, T cell signaling abnormalities contribute to aberrant immune cell function and autoimmunity. J. Clin. Invest. 125, 2220–2227 (2015).
22
M. Boulch, M. Cazaux, A. Cuffel, M. Ruggiu, V. Allain, B. Corre, Y. Loe-Mie, B. Hosten, S. Cisternino, S. Auvity, C. Thieblemont, S. Caillat-Zucman, P. Bousso, A major role for CD4+ T cells in driving cytokine release syndrome during CAR T cell therapy. Cell Rep. Med. 4, 101161 (2023).
23
J. N. Brudno, N. Lam, D. Vanasse, Y.-W. Shen, J. J. Rose, J. Rossi, A. Xue, A. Bot, N. Scholler, L. Mikkilineni, M. Roschewski, R. Dean, R. Cachau, P. Youkharibache, R. Patel, B. Hansen, D. F. Stroncek, S. A. Rosenberg, R. E. Gress, J. N. Kochenderfer, Safety and feasibility of anti-CD19 CAR T cells with fully human binding domains in patients with B-cell lymphoma. Nat. Med. 26, 270–280 (2020).
24
L. Alabanza, M. Pegues, C. Geldres, V. Shi, J. J. W. Wiltzius, S. A. Sievers, S. Yang, J. N. Kochenderfer, Function of Novel Anti-CD19 Chimeric Antigen Receptors with Human Variable Regions Is Affected by Hinge and Transmembrane Domains. Mol. Ther. 25, 2452–2465 (2017).
25
D. M. Barrett, Y. Zhao, X. Liu, S. Jiang, C. Carpenito, M. Kalos, R. G. Carroll, C. H. June, S. A. Grupp, Treatment of advanced leukemia in mice with mRNA engineered T cells. Hum. Gene Ther. 22, 1575–1586 (2011).
26
A. Taraseviciute, V. Tkachev, R. Ponce, C. J. Turtle, J. M. Snyder, H. D. Liggitt, D. Myerson, L. Gonzalez-Cuyar, A. Baldessari, C. English, A. Yu, H. Zheng, S. N. Furlan, D. J. Hunt, V. Hoglund, O. Finney, H. Brakke, B. R. Blazar, C. Berger, S. R. Riddell, R. Gardner, L. S. Kean, M. C. Jensen, Chimeric Antigen Receptor T Cell–Mediated Neurotoxicity in Nonhuman Primates. Cancer Discov. 8, 750–763 (2018).
27
M. R. Hines, T. E. Knight, K. O. McNerney, M. B. Leick, T. Jain, S. Ahmed, M. J. Frigault, J. A. Hill, M. D. Jain, W. T. Johnson, Y. Lin, K. M. Mahadeo, G. M. Maron, R. A. Marsh, S. S. Neelapu, S. Nikiforow, A. K. Ombrello, N. N. Shah, A. C. Talleur, D. Turicek, A. Vatsayan, S. W. Wong, M. V. Maus, K. V. Komanduri, N. Berliner, J.-I. Henter, M.-A. Perales, N. V. Frey, D. T. Teachey, M. J. Frank, N. N. Shah, Immune Effector Cell-Associated Hemophagocytic Lymphohistiocytosis-Like Syndrome. Transplant. Cell. Ther. 29, 438.e1–438.e16 (2023).
28
E. C. Morris, S. S. Neelapu, T. Giavridis, M. Sadelain, Cytokine release syndrome and associated neurotoxicity in cancer immunotherapy. Nat. Rev. Immunol. 22, 85–96 (2022).
29
F. Müller, J. Taubmann, L. Bucci, A. Wilhelm, C. Bergmann, S. Völkl, M. Aigner, T. Rothe, I. Minopoulou, C. Tur, J. Knitza, S. Kharboutli, S. Kretschmann, I. Vasova, S. Spoerl, H. Reimann, L. Munoz, R. G. Gerlach, S. Schäfer, R. Grieshaber-Bouyer, A.-S. Korganow, D. Farge-Bancel, D. Mougiakakos, A. Bozec, T. Winkler, G. Krönke, A. Mackensen, G. Schett, CD19 CAR T-Cell Therapy in Autoimmune Disease - A Case Series with Follow-up. N. Engl. J. Med. 390, 687–700 (2024).
30
M. T. Abrams, M. L. Koser, J. Seitzer, S. C. Williams, M. A. DiPietro, W. Wang, A. W. Shaw, X. Mao, V. Jadhav, J. P. Davide, P. A. Burke, A. B. Sachs, S. M. Stirdivant, L. Sepp-Lorenzino, Evaluation of efficacy, biodistribution, and inflammation for a potent siRNA nanoparticle: Effect of dexamethasone co-treatment. Mol. Ther. 18, 171–180 (2010).
31
I. Urits, D. Swanson, M. C. Swett, A. Patel, K. Berardino, A. Amgalan, A. A. Berger, H. Kassem, A. D. Kaye, O. Viswanath, A Review of Patisiran (ONPATTRO®) for the Treatment of Polyneuropathy in People with Hereditary Transthyretin Amyloidosis. Neurol. Ther. 9, 301–315 (2020).
32
T. H. Ramwadhdoebe, L. G. M. van Baarsen, M. J. H. Boumans, S. T. G. Bruijnen, M. Safy, F. H. Berger, J. F. Semmelink, C. J. van der Laken, D. M. Gerlag, R. M. Thurlings, P. P. Tak, Effect of rituximab treatment on T and B cell subsets in lymph node biopsies of patients with rheumatoid arthritis. Rheumatology 58, 1075–1085 (2019).
33
M. Nakou, G. Katsikas, P. Sidiropoulos, G. Bertsias, E. Papadimitraki, A. Raptopoulou, H. Koutala, H. A. Papadaki, H. Kritikos, D. T. Boumpas, Rituximab therapy reduces activated B cells in both the peripheral blood and bone marrow of patients with rheumatoid arthritis: Depletion of memory B cells correlates with clinical response. Arthritis Res. Ther. 11, R131 (2009).
34
C. Tur, M. Eckstein, J. Velden, S. Rauber, C. Bergmann, J. Auth, L. Bucci, G. Corte, M. Hagen, A. Wirsching, R. Grieshaber-Bouyer, P. Reis, N. Kittan, J. Wacker, A. R. Rigau, A. Ramming, M.-A. D’Agostino, A. Hartmann, F. Müller, A. Mackensen, A. Bozec, G. Schett, M. G. Raimondo, CD19-CAR T-cell therapy induces deep tissue depletion of B cells. Ann. Rheum. Dis. 84, 106–114 (2024).
35
A. G. Stewart, A. S. Henden, Infectious complications of CAR T-cell therapy: A clinical update. Ther. Adv. Infect. Dis. 8, 20499361211036773 (2021).
36
M. Suran, FDA Adds Boxed Warning to CAR T-Cell Therapies, but Says Benefits Outweigh Risks of Secondary Cancers. JAMA 331, 818–820 (2024).
37
G. Ghilardi, J. A. Fraietta, J. N. Gerson, V. M. Van Deerlin, J. J. D. Morrissette, G. C. Caponetti, L. Paruzzo, J. C. Harris, E. A. Chong, S. P. Susanibar Adaniya, J. Svoboda, S. D. Nasta, O. H. Ugwuanyi, D. J. Landsburg, E. Fardella, A. J. Waxman, E. R. Chong, V. Patel, R. Pajarillo, I. Kulikovskaya, D. B. Lieberman, A. D. Cohen, B. L. Levine, E. A. Stadtmauer, N. V. Frey, D. T. Vogl, E. O. Hexner, S. K. Barta, D. L. Porter, A. L. Garfall, S. J. Schuster, C. H. June, M. Ruella, T cell lymphoma and secondary primary malignancy risk after commercial CAR T cell therapy. Nat. Med. 30, 984–989 (2024).
38
C. J. Nicolai, M. H. Parker, J. Qin, W. Tang, J. T. Ulrich-Lewis, R. J. Gottschalk, S. E. Cooper, S. A. Hernandez Lopez, D. Parrilla, R. S. Mangio, N. G. Ericson, A. H. Brandes, S. Umuhoza, K. R. Michels, M. M. McDonnell, L. Y. Park, S. Shin, W.-H. Leung, A. M. Scharenberg, H.-P. Kiem, R. P. Larson, L. O. Beitz, B. Y. Ryu, In vivo CAR T-cell generation in nonhuman primates using lentiviral vectors displaying a multidomain fusion ligand. Blood 144, 977–987 (2024).
39
N. Verdun, P. Marks, Secondary Cancers after Chimeric Antigen Receptor T-Cell Therapy. N. Engl. J. Med. 390, 584–586 (2024).
40
G. Pesole, M. Attimonelli, S. Liuni, A backtranslation method based on codon usage strategy. Nucleic Acids Res. 16, 1715–1728 (1988).
41
P. M. Sharp, W. H. Li, The codon Adaptation Index—A measure of directional synonymous codon usage bias, and its potential applications. Nucleic Acids Res. 15, 1281–1295 (1987).
(0)eLetters
eLetters is a forum for ongoing peer review. eLetters are not edited, proofread, or indexed, but they are screened. eLetters should provide substantive and scholarly commentary on the article. Neither embedded figures nor equations with special characters can be submitted, and we discourage the use of figures and equations within eLetters in general. If a figure or equation is essential, please include within the text of the eLetter a link to the figure, equation, or full text with special characters at a public repository with versioning, such as Zenodo. Please read our Terms of Service before submitting an eLetter.
Log In to Submit a ResponseNo eLetters have been published for this article yet.
Gerelateerde artikelen
- CAR-T-celtherapie geneest patienten met Lupus en leukemie maar is duur, ziekmakende afweercellen wegzuigen uit bloed van proefdieren via mRNA is even effectief en goedkoper
- CAR-T celtherapie maakt dat kinderen met neuroblastoma nu in 2025 al meer dan 10 jaar kankervrij zijn. Met uitgelicht een prachtig overlevingsverhaal van een kind van 4 jaar die anno 2025 al 19 jaar kankervrij is.
- CD19 Fast-CAR-T-cel therapie bij patienten met vergevorderde B-cel acute lymfatische leukemie (B-ALL) geven hele goede resultaten bij 15 van de 20 patienten langdurige complete remissies
- CAR-T celtherapie brengt binnen 1 jaar al 7 van de 44 patienten met leukemie en lymfklierkanker in totale remissie in Spanje in een open gezondheidsprogramma
- CAR-T celtherapie is zeer succesvol bij kankerpatienten maar loopt in Nederland vast op te strenge milieueisen, stellen Nederlandse top wetenschappers copy 1
- Immuuntherapie met gemanipuleerde T-cellen geeft spectaculair goede resultaten bij patienten met vergevorderde leukemie en B-cel lymfomen
- Immuuntherapie met gemanipuleerde T-cellen - CAR-T celtherapie ( tisagenlecleucel ) geeft spectaculair goede resultaten bij patienten met gevorderde lymfklierkanker - non-Hodgkin (B-lymfomen)
- Dendritische celtherapie met T-car cells wordt als proef vergoed vanuit basiszorgverzekering voor melanomen stadium IIIB en IIIC
- Longkanker: Dendritische celtherapie plus gemoduleerde T-cellen naast chemo geeft 25 procent betere mediane overall overleving op 5 jaar bij operabele niet-kleincellige longkanker
- Immuuntherapie met TIL - tumor infiltrating lymfocyten zorgt bij een kwart van de deelnemers voor jarenlange ziektevrije tijd bij patienten met uitgezaaide melanomen
- Immuuntherapie met CAR T-Cell Therapy (tisagenlecleucel (Kymriah) goedgekeurd door FDA voor gebruik bij kinderen en jong volwassenen met vorm van Acute Lymfatische Leukemie (ALL). copy 1 copy 1
- Immuuntherapie met T-car cells - Tumor Lymphocytic Infiltration is interessante ontwikkeling bij verschillende vormen van kanker. Hoe meer TLI hoe beter
- Immuuntherapie met gemoduleerde T-car cells geeft bij zwaar voorbehandelde lymfklierkanker non-Hodgkin alsnog uitstekende resultaten met 33 en 50 procent complete remissies
- Receptor-gemodificeerde T-cellen leiden tot totale remissies bij uitbehandelde agressieve acute lymfatische leukemie - ALL en geven hoop op genezende behandeling. copy 1
- Autologe genetisch gemodificeerde T-cellen gericht tegen het humaan papillomavirus (HPV) 16 E6 geeft bij patienten met vergevorderde zwaar voorbehandelde uitgezaaide HPV gerelateerde kanker uitstekende resultaten
- CAR-T cel therapie is een vorm van immuuntherapie die hele goede resultaten geeft. In Jama een overzicht van stand van zaken in de klinische praktijk
Plaats een reactie ...
Reageer op "CAR-T-celtherapie geneest patienten met Lupus en leukemie maar is duur, ziekmakende afweercellen wegzuigen uit bloed van proefdieren via mRNA is even effectief en goedkoper"